Сколько весит один электрод 3 мм: Сколько электродов в пачке 1-5 кг. Вес одного электрода и пачки

Вольфрамовые (неплавящиеся) электроды | Продукция

Версия для печати

ISO 6848	ГОСТ  ТУ	Цена за 1 шт. с НДС	Вес 1 шт.  (гр.)	Кол-во шт. в 1 кг	кол-во шт. в упак.	Описание	цвет
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-1,6х175	ЭВЛ             EWLa-1.5	56,64	6,45	155	10,00	Универсальные вольфрамовые электроды, сварка всех типов сталей и сплавов на переменном и постоянном токе (AC/DC). Электроды из сплава вольфрама с оксидом лантана имеют очень легкий первоначальный запуск дуги, низкую склонность к прожогам, устойчивую дугу и отличную характеристику повторного зажигания дуги. Содержание легирующих элементов : La2O3: 1.3-1.7. Содержание Вольфрама % — 97,80	желтый
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-2,0х175		88,50	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-2,4х175		129,80	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-3,0х175		206,50	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-3,2х175		236,00	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-4,0х175		365,80	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-4,8х175		531,00	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-5,0х175		619,50	66,67	15	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-15 Ф-6,0х175		885,00	100,00	10	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-1,0х175	ЭВЛ-2            EWLa-2	41,30	6,30	159	10,00	Универсальные вольфрамовые электроды, сварка всех типов сталей и сплавов на переменном и постоянном токе (AC/DC). Электроды из сплава вольфрама с оксидом лантана имеют очень легкий первоначальный запуск дуги, низкую склонность к прожогам, устойчивую дугу и отличную характеристику повторного зажигания дуги. Несущая способность электрода  на 50% больше при сварке на перем. токе, чем WP. Содержание легирующих элементов: La2O3-1.8-2.2; Содержание Вольфрама % -97,30	синий
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-1,6х175		56,64	6,45	155	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-2,0х175		88,50	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-2,4х175		127,44	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-3,0х175		206,50	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-3,2х175		236,00	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-4,0х175		365,80	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-4,8х175		531,00	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-5,0х175		619,50	66,67	15	5,00
Электрод Вольфрамовый WL-20 Ф-6,0х175		885,00	100,00	10	5,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-1,0х175	EWZr-8	47,20	6,30	159	10,00	Электрод WZ-8 для сварки Al, Mg и их сплавов на переменном токе (AC), электроды предпочтительны для сварки на переменном токе, когда не допускается загрязнение сварочной ванны. Содержание легирующих элементов: ZrO2: 0.70-0.90; Содержание вольфрама % — 99,10	белый
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-1,6х175		59,00	6,45	155	10,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-2,0х175		92,04	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-2,4х175		130,98	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-3,0х175		212,40	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-3,2х175		241,90	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-4,0х175		377,60	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WZ-8 Ф-4,8х175		542,80	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-1,0х175	EWCe-2	41,30	6,30	159	10,00	Сварка всех типов сталей и сплавов на переменном и постоянном токе (AC/DC). Сплав вольфрама с 2% оксида церия улучшает эмиссию электрода, начальный запуск дуги и увеличивает допустимый сварочный ток. Содержание легирующих элементов : CeO2: 1.8-2.2. Содержание Вольфрама % — 97,80	серый
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-1,6х175		56,64	6,45	155	10,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-2,0х175		88,50	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-2,4х175		127,44	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-3,0х175		201,78	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-3,2х175		228,92	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-4,0х175		356,36	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WC-20 Ф-4,8х175		513,30	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-1,0х175	EWTh-2	53,10	6,30	159	10,00	Сварка углеродистых, низколегированных и нержавеющих сталей,  титана, меди и их сплавов на постоянном токе (DC). Сплав вольфрама с 1,8-2,2% оксида тория. Торированные электроды хорошо сохраняют свою форму при больших сварочных токах. Содержание легирующих элементов : ThO2: 1.8-2.2. Содержание Вольфрама % — 97,30	красный
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-1,6х175		76,70	6,45	155	10,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-2,0х175		118,00	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-2,4х175		165,20	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-3,0х175		226,56	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-3,2х175		261,96	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-4,0х175		377,60	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WT-20 Ф-4,8х175		542,80	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-1,0х175	ЭВИ-1   EWYt-2	41,30	6,30	159	10,00	Иттрированые вольфрамовые электроды  наиболее стойкие из всех неплавящихся электродов. Сварка углеродистых, низко-легированных и нержавеющих  сталей, титана, меди и их сплавов на постоянном токе (DC). Иттрированые электроды  используются для сварки особо  ответственных соединений. Содержание легирующих элементов : YtO2: 1.80-2.20. Содержание Вольфрама % -97,80	темно-синий
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-1,6х175		59,00	6,45	155	10,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-2,0х175		92,04	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-2,4х175		130,98	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-3,0х175		212,40	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-3,2х175		241,90	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-4,0х175		377,60	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-4,8х175		542,80	62,50	16	5,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-5,0х175		619,50	66,67	15	5,00
Электрод Вольфрамовый WY-20 Ф-6,0х175		885,00	100,00	10	5,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-1,6х175	EWP	56,64	6,45	155	10,00	Сварка переменным током AC. Предназначены для сварки Al, Mg и их сплавов, так как они обеспеч-т хорошую устойчивость дуги как в аргоновой, так и в гелиевой среде. Из-за ограниченной тепловой нагрузки рабочий конец электрода из чистого вольфрама формируют в виде шарика. Легирующие элементы отсутствуют. Содержание Вольфрама % -99,95	зеленый
Электрод Вольфрамовый WP Ф-2,0х175		88,50	10,31	97	10,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-2,4х175		129,80	14,93	67	10,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-3,0х175		201,78	23,26	43	10,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-3,2х175		228,92	26,32	38	10,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-4,0х175		356,36	41,67	24	5,00
Электрод Вольфрамовый WP Ф-4,8х175		513,30	62,50	16	5,00

Электроды ОК-46.

00 Э-46 d 3мм (пачка 5,3кг) ESAB

Сварочные электроды ОК 46 предназначены для сварки низколегированных и низкоуглеродистых сортов стали с пределом текучести до 380 МПа. Сварку данными электродами производят во всех пространственных положения, переменным и постоянным током любой полярности. Электроды ОК 46 можно смело назвать универсальными.

Изготавливают диаметром: 2, 2.5, 3, 4, 5.

Технические характеристики ОК 46.00.

Покрытие: рутил-целлюлозное;

Стержень электрода: стальная сварочная проволока Св08 (Св08А);

Производительность при наплавке (диаметр 4.0): 1.4 кг/ч;

Расход электродов на 1 кг наплавленного металла: 1.7 кг;

Наплавочный коэффициент: 8.5 г/А·ч;

Ток: постоянный и переменный любой полярности;

Напряжение холостого хода: 50 В;

Режим прокалки: 70-90°С, 1 час.

Таблица 1.

Технические характеристики сварочных электродов ОК 46.00.

ОК 46 малочувствительны к плохо зачищенной поверхности металла от ржавчины, к воде, окисленным поверхностям и другим загрязнениям, что говорит о их технологичности. ОК 46.00 можно использовать при сварке гальванических поверхностей, т.е. с оцинкованным покрытием. Также к плюсу этих электродов можно отнести легкость поджигов первой и последующих дуг, а значит сварку можно производить как на коротких расстояниях (прихватками), так и на длинных.

Шов ОК 46.00.

Отличительной чертой ОК 46.00 являются его швы. По поверхности металла формируется гладких шов с плавным переходом к свариваемым деталям. Можно сказать, что они имеют хороший товарный вид и отличную визитную карточку.

Механические характеристики свойств металла шва ОК 46.00.

Предел текучести: 400 МПа;

Временное сопротивление электродов: 515 МПа;

Относительное удлинение: 25 %;

Ударная вязкость: 140 Дж/см².

Таблица 2.

Массовая доля химических элементов в сварочном шве.

Сварка электродами ОК 46.

Сварка электроды ОК 46 может производиться на относительно низких пороговых значениях минимального тока. Это говорит о том, что в отличии от других марок электродов, при низких значениях тока, дуга неизменно, стабильно горит. Благодаря малым напряжениям на холостом ходе стало возможно проводить сварочные работы в повседневном быту от домашних источников питания.

Экономическая составляющая при работе данными электродами не высока.

Электроды ОК 

46. 00 технические характеристики.

Из-за низкого тепловложения возможна сварка металла с широкими зазорами между ними.

Также к достоинствам можно отнести относительно низкие температуры в области сварки, что не допускает перегрева, образование горячих трещин и разбрызгивания.

Аналоги: АНО 4, АНО 6, АНО 29М, АНО 23, ОЗС 6, ОЗС 12, МР 3.

Сварочные электроды ОК 46.00 используют по всему и во всех отраслях, благодаря своим качествам и быстротой проведения свариваемых работ. Их швы обладают высокой герметичностью и хорошей стойкостью к агрессивным средам.

Написать отзыв

Ваше имя:

Ваш отзыв:

Примечание: HTML разметка не поддерживается! Используйте обычный текст.

Оценка:
    Плохо 

 Хорошо

Защита от роботов

Нажмите на Я НЕ РОБОТ

Биосенсор с двумя электродами для измерения уровня глюкозы и лактата у мышей с нормальным ожирением и мышами с длительным ожирением с использованием одной капли цельной крови

1. Bachmann K.N., Wang T.J. Биомаркеры сердечно-сосудистых заболеваний: вклад в прогнозирование риска у людей с диабетом. Диабетология. 2018;61:987–995. doi: 10.1007/s00125-017-4442-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Ландете Дж. М. Обзор пищевых векторов молочнокислых бактерий: от лаборатории до их применения. крит. Преподобный Биотехнолог. 2017;37:296–308. doi: 10.3109/07388551.2016.1144044. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Ольчук Д., Прифер Р. История использования непрерывных мониторов глюкозы (НГМ) при самоконтроле сахарного диабета. Диабет метаб. Синдр. клин. Рез. 2018; 12:181–187. doi: 10.1016/j.dsx.2017.09.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Rathee K., Dhull V., Dhull R., Singh S. Биосенсоры на основе электрохимического обнаружения лактата: всесторонний обзор. Биохим. Биофиз. Отчет 2016; 5: 35–54. doi: 10.1016/j.bbrep.2015.11.010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Брукс Г. А. Наука и перевод теории лактатного челнока. Клеточный метаб. 2018;27:757–785. doi: 10.1016/j.cmet.2018.03.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Mulukutla B.C., Yongky A., Le T., Mashek D., Hu W.-S. Регуляция метаболизма глюкозы — взгляд с точки зрения клеточной биотехнологии. Тенденции биотехнологии. 2016; 34: 638–651. doi: 10.1016/j.tibtech.2016.04.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Касим А., Туркотт М., Де Соуза Р.Дж., Самаан М.К., Шампредон Д., Душофф Дж., Спикман Дж.Р., Мейр Д. О происхождении ожирения: выявление биологические, экологические и культурные факторы генетического риска среди населения. Обес. Ред. 2018; 19: 121–149. doi: 10.1111/обр.12625. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Moioli A., Maresca B., Manzione A., Napoletano A., Coclite D., Pirozzi N., Punzo G., Menè P. Молочнокислый ацидоз, связанный с метформином ( MALA): Клиническое профилирование и управление. Дж. Нефрол. 2016; 29: 783–789. doi: 10.1007/s40620-016-0267-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Ciobanu M., Taylor D.E., Wilburn J.P., Cliffel D.E. Биосенсоры глюкозы и лактата для сканирующей электрохимической микроскопии изображений одиночных живых клеток. Анальный. хим. 2008; 80: 2717–2727. doi: 10.1021/ac7021184. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Kanso H., García MBG, Ma S., Ludwig R., Fanjul-Bolado P., Santos D.H. Двойной биосенсор для одновременного мониторинга лактата и глюкозы на основе электрода с тонкослойной проточной кюветой. Электроанализ. 2017;29:87–92. doi: 10.1002/elan.201600487. [CrossRef] [Google Scholar]

11. Guerif F., McKeegan P., Leese H.J., Sturmey R.G. Простой подход к анализу потребления и высвобождения (CORE) метаболической активности в отдельных эмбрионах млекопитающих. ПЛОС ОДИН. 2013;8:e67834. doi: 10.1371/journal.pone.0067834. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Кроуфорд С.О., Хугевен Р., Бранкати Ф.Л., Астор Б.К., Баллантайн С. М., Шмидт М.И., Янг Дж.Х. Ассоциация лактата крови с диабетом 2 типа: риск атеросклероза в исследованиях МРТ сонных артерий. Междунар. Дж. Эпидемиол. 2010;39:1647–1655. doi: 10.1093/ije/dyq126. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Ву Ю., Донг Ю., Атефи М., Лю Ю., Эльшимали Ю., Вадгама Дж. В. Лактат, игнорируемый фактор диабета и рака Взаимодействие. Медиат. Воспаление. 2016;2016:6456018. doi: 10.1155/2016/6456018. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Ким С.-Х., Ян С.-О., Ким Х.-С., Ким Ю., Пак Т., Чой Х.-К. Метаболическая оценка на основе 1H-ядерной магнитно-резонансной спектроскопии в крысиной модели ожирения, вызванного диетой с высоким содержанием жиров. Анальный. Биоанал. хим. 2009; 395:1117–1124. doi: 10.1007/s00216-009-3054-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Duggan G.E., Hittel D.S., Hughey C.C., Weljie A., Vogel HJ, Shearer J. Дифференциация краткосрочных и долгосрочных эффектов диеты у мышей с ожирением с использованием 1H- Метаболомика ядерно-магнитного резонанса. Диабет Ожирение. Метаб. 2011;13:859–862. doi: 10.1111/j.1463-1326.2011.01410.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Серкова Н.Дж., Джекман М., Браун Дж.Л., Лю Т., Хиросе Р., Робертс Дж.П., Махер Дж.Дж., Ниманн К.Ю. Метаболическое профилирование печени и крови крыс Цукер с ожирением. Дж. Гепатол. 2006; 44: 956–962. doi: 10.1016/j.jhep.2005.07.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Уолдрам А., Холмс Э., Ван Ю., Ранталайнен М., Уилсон И.Д., Туохи К., Маккартни А.Л., Гибсон Г.Р., Николсон Дж.К. Нисходящее системное биологическое моделирование ассоциаций метаботипа и микробиома хозяина у грызунов с ожирением. Дж. Протеом Рез. 2009 г.;8:2361–2375. doi: 10.1021/pr8009885. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Rull A., Sage F.C., Hagedon M., Hamilton L., Patrone J., Gerasopoulos K. Метаболическое фенотипирование генетически модифицированных мышей: An. Метабономический подход ЯМР. Биохимия. 2009;91:1053–1057. doi: 10.1016/j.biochi.2009.04.019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Куррано Л.Дж., Сейдж Ф.К., Хагедон М., Гамильтон Л., Патрон Дж., Герасопулос К. Носимая сенсорная система для обнаружения лактата в поте. науч. 2018;8:15890. doi: 10.1038/s41598-018-33565-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Sung R., Heo Y. Электрохимический биосенсор на основе сэндвич-ИФА для лептина в модели контроля и ожирения, вызванного диетой. Биосенсоры. 2020;11:7. doi: 10.3390/bios11010007. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Chen L.-D., Wang W.-J., Wang G.-J. Электрохимическое обнаружение электролитов с использованием твердотельного ионоселективного электрода моноблочного типа. Биосенсоры. 2021;11:109. doi: 10.3390/bios11040109. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Van der Stam W., de Graaf M., Gudjonsdottir S., Geuchies J.J., Dijkema J.J., Kirkwood N., Evers W.H., Longo A. , Хаутепен А.Дж. Настройка и исследование распределения состояний ловушек Cu+ и Cu2+, ответственных за широкополосную фотолюминесценцию в нанокристаллах CuInS2. АКС Нано. 2018;12:11244–11253. doi: 10.1021/acsnano.8b05843. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Cai Y., Liang B., Chen S., Zhu Q., Tu T., Wu K., Cao Q., Fang L. , Liang X., Ye X. Одноэтапная модификация нанополианилин/глюкозооксидазы на гибком электроде с двухсторонней печатью для непрерывного мониторинга уровня глюкозы: характеристика, оценка цитотоксичности и эксперименты in vivo. Биосенс. Биоэлектрон. 2020;165:112408. doi: 10.1016/j.bios.2020.112408. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

24. Song Y., Shen Y., Gong C., Chen J., Xu M., Wang L., Wang L. Новый биосенсор глюкозы на основе Tb@Mesoporous Metal-Organic Frameworks/Carbon Nanotube Nanocomposites. ХимЭлектроХим. 2017;4:1457–1462. doi: 10.1002/celc.201600895. [CrossRef] [Google Scholar]

25. Ван Б., Шен Дж., Хуан Ю., Лю З., Чжуан Х. Графеновые квантовые точки и биосенсор, связанный с ферментом, для высокочувствительного определения перекиси водорода и глюкозы. Междунар. Дж. Мол. науч. 2018;19:1696. дои: 10.3390/ijms1

96. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Guler M., Turkoglu V., Kivanc M.R. Новый ферментативный биосенсор глюкозы и неферментативный сенсор перекиси водорода на основе (3-аминопропил)триэтоксисилана, функционализированного восстановленным графеном Окись. Электроанализ. 2017;29:2507–2515. doi: 10.1002/elan.201700417. [CrossRef] [Google Scholar]

27. Бхиде А., Лин К.С., Мутукумар С., Прасад С. Мониторинг лактата по требованию для оценки физиологических реакций у людей, ведущих малоподвижный образ жизни. Аналитик. 2021; 146: 3482–3492. doi: 10.1039/D1AN00455G. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Раджаратинам Т., Ким С., Тирумалай Д., Ли С., Квон М., Пайк Х.Дж., Ким С., Чанг С.С. Лактатный биосенсор для диагностики бактериальной инфекции у оливковой камбалы (Paralichthys olivaceus). Биосенсоры. 2021;11:439. doi: 10.3390/bios11110439. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Nien Y.H., Kang Z.X., Su T.Y., Ho C.S., Chou J.C., Lai C.H., Kuo P.Y., Lai T.Y., Dong Z.X., Chen Y.Y., et др. Исследование гибкого матричного лактатного биосенсора на основе пленок оксида цинка, легированных медью, модифицированных наночастицами железо-платина. Полимеры. 2021;13:2062. дои: 10.3390/polym13132062. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Несакумар Н., Сетураман С., Кришнан У.М., Райаппан Дж.Б. Изготовление биосенсора лактата на основе лактатдегидрогеназы, иммобилизованной на наночастицах оксида церия. J. Коллоидный интерфейс Sci. 2013; 410:158–164. doi: 10.1016/j.jcis.2013.08.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Пиано М., Сербан С., Питтсон Р., Драго Г.А., Харт Дж.П. Амперометрический биосенсор лактата для проточно-инъекционного анализа на основе угольного электрода, напечатанного методом трафаретной печати, содержащего краситель Meldola Blue- Соль Рейнеке, покрытая лактатдегидрогеназой и НАД+ Таланта. 2010;82:34–37. doi: 10. 1016/j.talanta.2010.03.051. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

32. Рахман М.М., Шиддикы М.Дж., Рахман М.А., Шим Ю.Б. Лактатный биосенсор на основе лактатдегидрогеназы/никтотинамидадениндинуклеотида (окисленная форма), иммобилизованного на композитной пленке из проводящего полимера/многостенных углеродных нанотрубок. Анальный. Биохим. 2009; 384: 159–165. doi: 10.1016/j.ab.2008.09.030. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Прието-Симон Б., Фабрегас Э., Харт А. Оценка различных стратегий разработки амперометрических биосенсоров для L-лактата. Биосенс. Биоэлектрон. 2007; 22: 2663–2668. doi: 10.1016/j.bios.2006.10.034. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

34. Зарьянов Н.В., Никитина В., Карпова Е.В., Карякина Е.Е., Карякин А.А. Неферментативный сенсор для обнаружения лактата в человеческом поте. Анальный. хим. 2017;89:11198–11202. doi: 10.1021/acs.analchem.7b03662. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Lan T., Zhang J., Lu Y. Преобразование глюкометра в универсальный медицинский прибор для диагностики in vitro в мобильном здравоохранении. Биотехнолог. Доп. 2016; 34:331–341. doi: 10.1016/j.biotechadv.2016.03.002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Муньос С., Франкхаузер С., Элиас И., Ферре Т., Идальго А., Монтейс А.М., Молас М., Сердан С., Пухоль А., Руберте Дж. и др. Хронически повышенное поглощение глюкозы жировой тканью приводит к выработке лактата и улучшению чувствительности к инсулину, а не к ожирению у мышей. Диабетология. 2010;53:2417–2430. doi: 10.1007/s00125-010-1840-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Chang R.C.-A., Shi L., Huang C.C.-Y., Kim A.J., Ko M.L., Zhou B., Ko G.Y.-P. Диета с высоким содержанием жиров, вызванная дисфункцией сетчатки. расследование Офтальмол. Вис. науч. 2015;56:2367–2380. doi: 10.1167/iovs.14-16143. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Cheng J., Morisaki H., Toyama K., Sugimoto N., Shintani T., Tandelilin A., Hirase T., Holmes E.W., Morisaki T. AMPD1: новая терапевтическая мишень для обращения вспять резистентности к инсулину. БМС Эндокр. Беспорядок. 2014;14:96. doi: 10.1186/1472-6823-14-96. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Soto M., Orliaguet L., Reyzer M.L., Manier M.L., Caprioli RM, Kahn C.R. Пируват вызывает оцепенение у мышей с ожирением. проц. Натл. акад. науч. США. 2018; 115:810–815. doi: 10.1073/pnas.1717507115. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Чой Ю.-С., Канг С., Ко С.-Ю., Ли С., Ким Дж.Ю., Ли Х., Сон Дж.Э., Ким Д.-Х., Ким Э., Ким Ч.Х., и другие. Гиперполяризованная [1–13C] МР-спектроскопия пирувата выявляет измененный гликолиз в мозге модели мышей с когнитивными нарушениями, получавших диету с высоким содержанием жиров. Мол. Мозг. 2018;11:74. doi: 10.1186/s13041-018-0415-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Sun C., Li X., Liu L., Conet M.J., Guan Y., Fan Y., Zhou Y. Влияние времени голодания на измерение уровня глюкозы в крови мышей. Междунар. Дж. Клин. Эксп. 2016;2:4186–4189. [Google Scholar]

42. Haugen Ø.P., Vallenari E., Belhaj I., Småstuen M.C., Storm-Mathisen J., Bergersen L.H., Åmellem I. Динамика лактата в крови бодрствующих и анестезированных мышей после внутрибрюшинных и подкожных инъекций. лактата — секс имеет значение. Пир Дж. 2020;8:e8328. doi: 10.7717/peerj.8328. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Иверсен Н.К., Малте Х., Баатруп Э., Ван Т. Нормальный кислотно-щелочной статус мышей. Дыхание Физиол. Нейробиол. 2012; 180: 252–257. doi: 10.1016/j.resp.2011.11.015. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

44. Чен С.-Н., Ляо Ю.-Х., Линь С.-Ю., Ю Дж.-Х., Ли З.-Дж., Линь Ю.-С., Чанг Г.- Дж., Лин С.-Х., Вонг А.М.-К. Ожирение, вызванное диетой, максимально ускоряет накопление лактата в крови крыс в ответ на дополнительные упражнения. Являюсь. Дж. Физиол. интегр. Комп. Физиол. 2017; 313: R601–R607. doi: 10.1152/ajpregu.00337.2016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Miao H., Chen L., Hao L., Zhang X., Chen Y., Ruan Z., Liang H. Стеариновая кислота индуцирует выработку провоспалительных цитокинов частично за счет активации. пути лактат-HIF1α в хондроцитах. науч. 2015 г.; 5:13092. doi: 10.1038/srep13092. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Placzkowska S., Pawlik-Sobecka L., Kokot I., Piwowar A. Непрямое обнаружение резистентности к инсулину: текущие клинические тенденции и лабораторные ограничения. Биомед. Пап. 2019;163:187–199. doi: 10.5507/bp.2019.021. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Milano S., Carmosino M., Gerbino A., Svelto M., Procino G. Наследственный нефрогенный несахарный диабет: патофизиология и возможное лечение. Обновление. Междунар. Дж. Мол. науч. 2017;18:2385. дои: 10.3390/ijms18112385. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Абель Э.Л. Вызванные алкоголем изменения газов крови, глюкозы и лактата у беременных и небеременных крыс. Алкоголь. 1996; 13: 281–285. doi: 10.1016/0741-8329(95)02056-X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Колберг С.Р., Олбрайт А.Л., Блиссмер Б.Дж., Браун Б., Часан-Табер Л., Фернхолл Б., Регенштейнер Дж.Г., Рубин Р.Р., Сигал Р.Дж., Американский колледж спорта Медицина и др. Упражнения и диабет 2 типа: Американский колледж спортивной медицины и Американская ассоциация диабета: Совместное заявление. Уход за диабетом. 2010;33:e147–e167. дои: 10.2337/dc10-9990. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Графитовые электроды | Tokai Carbon Co., Ltd.

В процессе производства стали железный лом плавится в электродуговой печи и перерабатывается. Графитовые электроды, своего рода проводник, являются важным компонентом в такой печи. Они могут плавить лом при температуре около 1600 ℃.

Что такое графитовые электроды?

Знаете ли вы, что есть два способа сделать железо? Доменный метод и электродуговой метод. Метод электродуговой печи перерабатывает использованный железный лом путем его плавления в электродуговой печи. Именно графитовые электроды внутри печи фактически плавят железо. Графит обладает высокой теплопроводностью и очень устойчив к нагреву и ударам. Он также имеет низкое электрическое сопротивление, что означает, что он может проводить большие электрические токи, необходимые для плавления железа. В последние годы графитовые электроды стали еще эффективнее: теперь они могут проводить еще более высокие токи и большую мощность. Используя опыт, накопленный за столетие инноваций, компания Tokai Carbon разработала самые большие в мире электроды. Они имеют диаметр 32 дюйма (около 80 см) и длину 3 метра. Графитовые электроды Tokai Carbon рассчитаны на долгий срок службы, что делает их имя, которому доверяют в отрасли.

Применение

• Изделия из железа и стали

Изделия из железа и стали

Вторичное железо и сталь используются в самых разных отраслях промышленности и в различных продуктах.

Графитовые электроды Разновидности

Для печей постоянного тока (печи постоянного тока) / Размер: 22-32 дюйма

Электроды для печей постоянного тока, для которых требуется 1 столб графитовых электродов.